材料与方法

1.1 酶解发酵豆粕的制备

参考魏金涛等的方法，在塑料桶中加入10ｋｇ粒径12目的豆粕，按300U/ｇ 添加木瓜蛋白酶、2×107 CFU/ｇ 接种植物乳杆菌之后加入37℃温水30ｋｇ，搅拌均匀后置于37 ℃ 恒温培养箱中酶解发酵24ｈ，所得豆粕酶解发酵物用于配制饲粮。饲喂用的豆粕酶解发酵物均在配料前1天的07：00和15：00各制备1次。

1.2 试验动物与饲养管理

1.2.1 试验动物与试验设计

采用单因子完全随机试验设计，按照品种、胎次基本一致的原则，将144 头9日龄健康的“杜×长×大”三元杂交育肥仔猪随机分为３ 组，每组６个重复，每个重复８ 头猪（公母各占1/2）。阴性对照组饲喂基础饲粮，抗生素对照组饲喂基础饲粮＋60ｇ/ｔ 吉他霉素，试验组饲喂试验饲粮（基础饲粮中10％豆粕被豆粕酶解发酵物替代）。预试期7ｄ，正试期42ｄ。

1.2.2 饲养管理

试验场地采用漏缝地板，猪只自由采食，自由饮水。免疫消毒程序按照猪场常规方法进行。

1.3 试验饲粮

饲粮参照NRC（2012） 猪的营养需要并结合所在猪场实际制定配方，其组成及营养水平见表1。阴性对照组饲粮饲喂前添加自来水做成湿拌料，***计算水的添加量，保证饲粮中含水量为28％左右。

1.4 样品的采集与制备

1.4.1 血液采集与血清的制备

在正试期第42天从每组选取6头猪，抽取颈静脉血静置后3000r/min 离心10min，制备的血清置于-70℃ 超低温冰箱中保存备用。

1.4.2 盲肠内容物的采集

在正试期第42天从每组选取6头猪，颈部放血致死，无菌条件下取十二指肠、盲肠和大肠内容物于灭菌的冻存管中，并迅速将冻存管放于充满液氮的液氮罐中，备测。

1.5 测定指标与方法

1.5.1 试验仪器

AUY-220型电子分析天平，日本岛津UV-2550型紫外可见分光光度计，德国福斯FOSS-2300型全自动凯氏定氮仪，罗氏MODULP-800全自动生化分析仪，EDC-810PCR扩增仪，JY300水平电泳仪，JY-02S 紫外分析仪。

1.5.2 营养成分的测定

粗蛋白质含量测定按照GB/T6432-1994《饲料中粗蛋白测定方法》进行；小肽含量测定按照GB/T22492-2008《大豆肽粉》方法进行；水溶性蛋白含量测定按照NY/T1205-2006《大豆水溶性蛋白含量的测定》方法进行；乳酸杆菌数量的测定采用MRS 琼脂培养基计数。

1.5.3 生长性能的测定

分别在试验开始与试验结束时，以个体为单位对所有试验猪进行空腹称重；试验过程中详细观察与记录仔猪健康和生长状况、采食量、腹泻等情况。计算平均日增重、平均日采食量、料重比和腹泻率等。

1.5.4 血清指标的测定

血清生化指标的测定采用罗氏MODULP-800全自动生化分析仪测定。

血清中总抗氧化能力（T-AOC）、超氧化物歧化酶（SOD）活性、丙二醛（MDA）含量等测定采用试剂盒法，试剂盒均购自南京建成生物工程研究所。

1.5.5 肠道菌群结构的测定

采用实时荧光定量PCR方法测定肠道中总细菌数、乳酸杆菌数和大肠杆菌数。引物序列及参数见表2，引物由上海生工生物工程有限公司合成。按照北京天根基因组DNA提取试剂盒说明书提取肠内容物DNA，通过将含有目的DNA片段的琼脂糖凝胶进行回收，纯化分别获得总细菌、乳酸杆菌和大肠杆菌的标准品，然后将细菌的标准品进行实时荧光定量PCR反应，以不同标准品的拷贝数的对数值为横坐标，以实时荧光定量PCR反应过程中出现荧光信号的初始循环数（Ct）为纵坐标绘制标准曲线。同时，将待测样品进行实时荧光定量PCR反应样品的Ct值，并将其和标准曲线进行比较，获得各个样品中细菌数量。

1.6 数据统计分析

采用SPSS 18.0 统计软件进行单因素方差分析（one-way ANOVA），不同组间的平均值差异用Student-Newman-Keuls（S-N-K） 比较 。数据结果采用“平均值±标准差”表示。P＜0.05 表示差异显著。

2结　果

2.1 豆粕酶解发酵前后营养成分变化

从表３ 可知，豆粕酶解发酵前后总能及粗蛋白质、粗脂肪、粗纤维、粗灰分、钙和总磷含量差异不显著（P＞0.05）；但是豆粕酶解发酵物中的小肽和水溶性蛋白含量比豆粕分别提高了3.56倍和4.76倍（P＜0.05），乳酸杆菌数量达到6.14×109CFU/ｇ。

2.2 豆粕酶解发酵物对仔猪生长性能的影响

从表4可知，试验组仔猪的末重、平均日增重、平均日采食量分别比阴性对照组提高5.06％、10.07％、5.03％（P＜0.05），腹泻率比阴性对照组降低39.59％（P＜0.05）；试验组与抗生素对照组相比各指标差异均不显著（P ＞0.05），但是平均日增重和平均日采食量都有高于抗生素对照组的趋势。

2.3 豆粕酶解发酵物对仔猪血清指标的影响

从表５ 可知，试验组仔猪的碱性磷酸酶、谷丙转氨酶活性均显著高于阴性对照组（P ＜0.05），其他指标差异不显著（P ＞0.05）；试验组和抗生素对照组仔猪血清生化指标差异不显著（P＞0.05）。

从表6可知，试验组仔猪血清T-AOC、SOD 活性、MDA 含量与阴性对照组相比均有显著改善（P＜0.05），与抗生素对照组相比差异不显著（P＞0.05）。

2.4 豆粕酶解发酵物对仔猪肠道菌群结构的影响

从表７ 可知，试验组仔猪盲肠、大肠中乳酸杆菌数量显著高于阴性对照组和抗生素对照组（P＜0.05）；豆粕酶解发酵物使肠道各部位食糜中乳酸杆菌数量大幅度提高，且随着肠段后移，乳酸杆菌数量增加幅度越大；试验组仔猪肠道中盲肠、大肠中的大肠杆菌数量有低于抗生素对照组和阴性对照组的趋势（P＞0.05）。试验组十二指肠中总细菌数比阴性对照组和抗生素对照组低（P ＜0.05），各组间盲肠、大肠中总细菌数差异不显著（P＞0.05）。

3讨　论

3.1 豆粕酶解发酵物对仔猪生长性能的影响

潘翠玲等发现大豆蛋白酶解物能克服早期断乳应激引起的仔猪食欲下降、腹泻和生长迟滞等不良现象。付晓等报道酶解豆粕组仔猪粗蛋白质、钙和磷消化率均高于对照组。这都说明了豆粕酶解后更容易被仔猪消化吸收。詹湉湉等报道豆粕合理的发酵时间为72ｈ，料水比为1∶0.7，寡肽和游离氨基酸含量可达2.48％。胡瑞等将豆粕液态发酵发酵时间为48ｈ，但是加入蛋白酶后发酵豆粕游离氨基酸含量提高了0.36％，大分子蛋白质降解程度显著升高。本研究利用木瓜蛋白酶和植物乳杆菌在液态酶解发酵豆粕24ｈ后小肽含量达到了9.63％，饲养试验结果表明试验组仔猪的末重、平均日增重、平均日采食量略优于抗生素对照组， 和阴性对照组相比提高了5.06％、10.07％、5.03％。这主要是由于豆粕酶解发酵后大分子蛋白被分解，提高了部分氨基酸含量，部分抗营养因子被降解，而且豆粕在液态下经植物乳杆菌发酵后产生大量乳酸等，使得所配制饲料具有酸香味，刺激动物食欲。本文中试验组仔猪腹泻率比阴性对照组低39.59％，与抗生素对照组差异不显著，据吕刚等报道酶解豆粕湿喂仔猪组全期料重比、腹泻指数优于干燥酶解豆粕组。本试验结果说明了豆粕酶解发酵后不经干燥直接配制饲粮，提高了饲粮适口性，有益于动物生长性能的提高，可以实现仔猪饲料中不添加促生长性抗生素。但是中国南方高温季节采用湿的豆粕酶解发酵物一定要防止原料久置变质。

3.2 豆粕酶解发酵物对仔猪血清指标的影响

血清碱性磷酸酶活性高低可以反映动物的生长速度和生长性能。本试验中试验组仔猪的碱性磷酸酶、谷丙转氨酶活性均显著高于阴性对照组，说明豆粕酶解发酵物可以促进仔猪蛋白质吸收，提高钙磷利用率，这与生长性能的表现呈一致性。机体内存在的各种抗氧化酶能够互相合作共同构成机体对自由基的**道防线。血清MDA含量的高低间接反映机体细胞受自由基攻击的严重程度。本试验中试验组仔猪血清T-AOC、SOD活性显著高于阴性对照组，MDA含量显著低于阴性对照组，说明豆粕酶解发酵物提高了仔猪机体抗氧化能力，减少自由基对机体的伤害。

3.3 豆粕酶解发酵物对仔猪肠道菌群结构的影响

健康仔猪肠道中多种细菌数量都随肠段后移而逐渐增加。乳酸杆菌是猪肠道正常菌群中的重要优势菌。若仔猪发生腹泻，仔猪肠道内优势菌群数量会发生改变，如乳酸杆菌、双歧杆菌数量会降低，大肠杆菌的数量增加。本研究中试验组仔猪盲肠、大肠段乳酸杆菌数量显著高于阴性对照组和抗生素对照组；豆粕酶解发酵物使肠道各部位食糜中乳酸杆菌数量大幅度提高，且随着肠段后移，乳酸杆菌数量增加幅度越大。试验组十二指肠中总细菌数比阴性对照组和抗生素对照组低，且十二指肠段总细菌数低于盲肠、大肠。这主要是由于十二指肠细菌的种类及数量极少，胃酸、胆汁作用及小肠液流量大，蠕动节奏快，细菌在繁殖前即被冲洗到远端回肠及结肠。试验组仔猪肠道中乳酸杆菌为优势菌群，挤占了大肠杆菌的生存空间，使得大肠杆菌数量下降，试验猪只腹泻率降低。本试验中抗生素选用的为目前在家禽和猪饲料中广泛使用的吉他霉素，吉他霉素可以使猪肠道中大肠杆菌数量显著减少，对乳酸杆菌数量却没有显著影响。仔猪肠道菌群由乳酸杆菌、双歧杆菌、小梭菌等厌氧菌以及肠杆菌、肠球菌等需氧菌组成，后期研究中笔者将对仔猪肠道中的双歧杆菌、肠球菌等进行分析定量，更为拥有地了解豆粕酶解发酵物对仔猪肠道中菌群结构的影响。

4结 论

豆粕酶解发酵物能促进仔猪生长发育，提高生长性能，增强机体抗氧化能力，利于乳酸杆菌在肠道内形成优势菌群。